一、物理破碎法

1. 超聲波破碎法
利用超聲波的空化效應(yīng)和機械振動破壞細胞膜，釋放蛋白質(zhì)。適用于細菌、培養(yǎng)細胞等，需控制功率和時間以防止蛋白質(zhì)變性。

2. 液氮研磨法
通過液氮冷凍組織后研磨成粉末，結(jié)合裂解液釋放蛋白質(zhì)，常用于植物或動物組織（如腦、脊髓）。

3. 高壓破碎法
通過高壓迫使細胞破裂，適用于微生物和大規(guī)模提取。

二、化學(xué)溶解法 

1. 洗滌劑裂解法
使用SDS、Triton X-100等去污劑溶解細胞膜，適用于細胞和組織的快速裂解。

2. 尿素/硫脲變性法
高濃度尿素（8-9 M）破壞蛋白質(zhì)非共價鍵，結(jié)合CHAPS去污劑提取疏水性蛋白，常用于雙向電泳樣本制備。

3. 三氯醋酸-丙酮沉淀法
通過TCA和丙酮沉淀蛋白質(zhì)，去除脂類及小分子雜質(zhì)，適用于植物和富脂樣本。

三、鹽析與沉淀法

1. 硫酸銨鹽析法
通過調(diào)節(jié)鹽濃度使蛋白質(zhì)沉淀，操作簡單且成本低，適合初步純化。

2. 有機溶劑沉淀法
使用乙醇、丙酮等降低蛋白質(zhì)溶解度，常用于去除雜蛋白或濃縮樣本。

四、層析與過濾法

1. 親和層析法
利用目標蛋白與配體（如Ni-NTA樹脂、抗體）的特異性結(jié)合進行純化，選擇性高但成本較高216。

2. 凝膠過濾法
基于分子量差異分離蛋白質(zhì)，適用于去除小分子雜質(zhì)或分離不同大小的蛋白復(fù)合物。

 五、特殊場景提取法

1. 線粒體蛋白提取
通過差速離心分離線粒體，結(jié)合裂解液（含甘露醇、EDTA）提取膜蛋白，適用于亞細胞結(jié)構(gòu)研究。

2. 細菌蛋白提取
使用溶菌酶或SDS裂解細菌細胞壁，結(jié)合離心去除碎片，常用于重組蛋白表達分析。

3. 雙向電泳前處理法
針對雙向電泳優(yōu)化，采用尿素/硫脲裂解液和還原劑（DTT）保持蛋白質(zhì)溶解性，減少電荷異質(zhì)性。

六、實驗優(yōu)化建議

樣本類型：植物組織需液氮研磨和TCA沉淀；動物組織推薦凍融循環(huán)或勻漿法。

抑制劑使用：裂解液中需添加蛋白酶抑制劑（如PMSF、亮肽素）和還原劑（DTT）防止降解。

溫度控制：全程冰上操作，避免蛋白質(zhì)變性或酶活性損失。

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